重金属对植物光合作用的影响研究进展
说明：文章内容仅供预览，部分内容可能不全。下载后的文档，内容与下面显示的完全一致。下载之前请确认下面内容是否您想要的，是否完整无缺。
重金属对植物光合作用的影响研究进展 高等植物的光合作用经常受到各种不利环境因素的影响，重金属污染就是其中的因素之一。重金属离子以各种途径和不同形式释放于环境[1]，它们作为一种逆境因子胁迫植物的各种生理过程，使植物的生长受到抑制。光合作用对重金属离子的作用较为敏感[2]，重金属胁迫使植物的光合速率下降，这已为众多实验所证明[3-7]，光合降低应与植物种类和发育时期以及重金属的种类密切相关，且与胁迫程度呈正相关。重金属离子对光合作用的毒害机理也已逐渐被深入探讨，目前的研究主要体现在以下几个方面： 一、重金属离子对叶绿素含量和叶绿体结构的影响 （1）叶绿素含量的变化 重金属离子Cd2+、Pb2+、Hg2+、Cr6+、Ni2+、Cu2+、Zn2+等均可使高植物的叶绿素含量明显降低[8-13]。有报道认为Cd在低浓度短期内对叶绿素合成有刺激作用，而超过一定浓度后才对叶绿素起破坏作用[10]。重金属导致叶绿素含量降低可能是引起光合速率下降的原因之一，但叶绿素含量的降低程度通常小于光合速率的降低[9-14]。还有研究表明，Cd对叶绿素合成的抑制早于对光合作用功能的抑制。叶绿素a和b受金属离子的影响程度往往不同，孙赛初等提出Cd对水生维管植物的叶绿素a和叶绿素b的影响中叶绿素a下降幅度更大[15]；陈国祥等通过用Hg2+、Cd2+分别处理莼菜科芽冬茎叶，任安芝等用Cr、Cd、Pd处理青菜叶片测定叶绿素含量和a/b比值也支持了上述观点[16，17]；但也有人报道Cd污染后的番茄叶绿素a/b值随处理浓度增大而增大，表明Cd对叶绿素b的影响比叶绿素a大[18]。重金属处理使叶绿素含量变化的原因有下述几种看法：重金属离子直接干扰了叶绿素的生物合成；在大麦幼苗中，Cd2+抑制了原叶素酸酯还原酶的活性[12]；另一个原因是由于重金属离子引起了叶绿素酶活性的升高，使叶绿素降解加快[19]；此外，重金属如Hg、Cu、Cd、Ni、Zn、Pd等可以替代叶绿素的中心镁原子，从而导致光合作用的破坏，也是其中的重要机制之一，并且可以用荧光显微镜观察、叶绿体吸收光谱、荧光动力学等方法进行原位检测，为重金属的毒性研究提供了很大方便；有人用荧光动力学的检测方法发现在高光强下，重金属替代Mg原子的反应可能专一性的发生在PSII反应中心[20]。 （2）叶绿体结构的变化 叶绿体是高等植物的光合器官，外由双层的叶绿体被膜所包围，内由片层系 统或扁平的类囊体所组成。有的类囊体垛叠在一起，称为基粒类囊体，由膜系统排列较松弛的间质类囊体所联结；基粒结构对光合作用的正常进行是必不可少的[21]。重金属离子可导致叶绿体超微结构的改变，用10цmol/LCd2+和Hg2+分别对菱处理后第八天，电子显微镜下可观察到叶绿体膨胀变形，基粒类囊体片层松散解体，叶绿体双层膜断裂，膜系统损伤[22]。此处，Cu2+Pb2+Cr2+Zn2+等重金属离子均能对叶绿体结构造成不同程度的破坏，出现叶绿体收缩或类囊体膨胀、基粒垛叠结构解体、基质减少，质体小球大量增多等现象[23，24]。彭鸣等以玉米为材料，研究Cd以高等植物细胞超微结构的影响，提出Cd对叶绿体的破坏与Cd沉积在类囊体上，并与膜上蛋白体结合进而破坏酶系统和阻碍叶绿体合成有关[25]。 有关实验表明，在处理介质中提高Mn2+浓度，叶绿体结构可部分恢复，基粒重新垛叠。若在培养介质中长期加入Mn2+，则可使被Cd2+抑制的以水为电子供体的光合活性全部恢复。而在Cd2+处理的离体叶绿体中，Mn2+只能使被抑制的光系统II活性部分恢复[19]。这暗示Cd2+对叶绿体结构的影响与锰有关。 二、重金属离子对植物类囊体膜结构和功能的影响 （1）对类囊体膜分子结构的影响 重金属离子对类囊体膜分子的结构的影响被认为与以下三方面有关：膜脂、膜蛋白、脂一蛋白的相互作用。Balazs和Gabor等[26]用FTIR和ESR的手段检测，认为重金属对类囊体膜的毒害效应具有元素专一性；Cu、Pb、Zn的作用能够改变膜脂的流动性和膜蛋白的空间结构，并使膜蛋白复合物解离，改度其热变性特征；而Cd、Ni则几乎无影响。Hg2+抑制绿藻光合作用的效应在照光一段时间后可以恢复，表明Hg2+的作用与PSII反应中心DI蛋白的代谢有关[27]。Cd2+对DI蛋白的代谢也有影响[28]。 用SDS——PAGE进行实验表明，一些重金属离子如Hg2+Cd2+Cu2+处理影响了类囊体膜的多肽组成[16，29，30]。Cd2+处理使LHCII部分解聚成单体且总量减少，不利于激发能向PSII分配[29]，而Zn2+的影响则与膜蛋白结构无关[30]。 （2）对类囊体膜电子传递活性的抑制作用 重金属离子Hg2+、Zn2+、Cd2+、Pb2+、Cu2+等对叶绿体光合电子传递均有抑制作用。一般来讲，光系统II的活性对重金属离子更为敏感[2]。Miles和Li[31]以菠菜和番茄为材料，分别用Pb2+和Cd2+处理离体叶绿体，测定了光合电子传递活性、Hill反应活性以及叶绿素a荧光，发现光系统II的活性受到严重 抑制，而在相同处理浓度下，光系统I的活性不受影响。在许多实验中都得到了与之相同的结果，表明光系统II电子传递对重金属离子有着普遍的敏感性[19]。对于重金属离子在光系统II的抑制部位和作用机理，一般借助于加入人工电子供体如DPC、NH2OH和MnCl2或抑制剂的方法来研究。Bazzaz和Govindjee[32]用Cd2+处理离体叶绿体,加入PSII氧化侧电子供体DPC,使Cd2+抑制的PSII活性恢复至对照水平，认为Cd2+作用于PSI氧化侧。VanDuijvendijk—Matteoli等以Cd2+处理菠菜离体叶绿体，叶绿素a可变荧光降低，加入NH2OH和外源Mn后，被抑制的PSII活性部分恢复，因此推测Cd2+直接作用于水裂解酶本身。Tripathy 和Mohanty用同样方法推测Zn抑制光合电子传递的部位位于PSII氧化侧的羟胺和DPC电子供给部位之前[19]。 至于重金属离子抑制PSII电子传递的机理，目前主要有以下三种观点：（1）重金属离子抑制了水氧化功能从而引起正电荷在水氧化系统水平上的积累，由此导致了围绕PSII的循环电子流动，使放氧能力丧失[19]。（2）破坏了叶绿素蛋白复合物，引起LHCH的解聚和总量减少，而LHCII在光能吸收、传递及激发能在光系统间的分配和调节方面起着十分重要的作用，重金属离子的作用导致激发能在两光系统间不能均衡分配，从而使光合作用法能正常进行[29]。（3）可能损伤了某些参与光合电子传递的膜蛋白[30]。 三、重金属离子对光合碳同化酶活性的影响 关于重金属离子对PCR循环（卡尔文循环）中关键酶的影响目前研究的相对较少。Sheoran等以Cajanus cajan L.为材料，研究了Cd2+和Ni2+在植物不同生长时期对光合作用和RuBP羟化酶、3—PGA激酶、NADP和NAD—3—磷酸甘油醛脱氢酶、醛缩酶、FBPase等酶活性的影响。在幼苗期，0.5mmol/L和1mmol/LCd2+和Ni2+分别使光合率降低50%和30%，对不同酶活性的抑制程度不等（2%——61%），RuBP羧化酶对离子的作用较为敏感，Ni2+对3——PGA激酶的影响最小。在植物生长晚期，Cd2+、Ni2+浓度增加至10mmol/L时才表现抑制作用，10mmol/L Cd2+使光合率降低86%，只使酶活性降低约40%；10mmol/L Ni2+使光合速率降低65%，而对酶活性则几乎无影响；表明重金属使酶活性的降低不是导致光合速率降低的直接原因[33]。Weigel的实验也表明莴苣叶肉原生质体的羧化反应对Cd2+作用不敏感[34]。Eicchan和Page等曾提出过不同的观点，认为重金属对光合作用的毒性机理主要是由于结合了酶导致酶催化功能的改变，使酶系统受损[35，36]。但更多的研究表明重金属离子对光合作用中酶的影响较小，而光合速率的下降可能是由叶绿素浓度和气孔导度的降低间接引起的，但二者也都并非解释光合作用被抑制的唯一原因[33]。电子传递系统似乎是重金属Cd2+、Ni2+等作用最敏感的部位，这在整体植物和离体叶绿体中都有证明[32，33]。 总之，重金属离子对植物光合作用的影响是复杂的、多方面的。不同重金属 离子可能有不同的作用部位和作用方式，而相同的重金属离子又因浓度和作用于不同的植物而有所差别，在自然环境中通常发生的可能是几种重金属离子的混合污染，它们的相互作用可能导致拮抗或协同效应，更增加了反应的复杂性，这都需要进一步深入细致的研究探讨。 参考文献 [1]吴鹏鸣主编.环境监测原理与应用[M]，北京：化学工业出版社，1988，212——214 [2]Marcelle R. Effects of stress on photosymthesis. Martinis Nijhoff, The Hague. 1983,317——382 [3]祁忠占，彭永康，宋玖雪等.汞对蔬菜幼苗生长及氧化酶同工酶的研究[J].环境科学学报，1991，11（3）：370——374 [4]李建宏，邰子厚，曾昭琪.Cu2+对蓝藻Spirnlina maxima光合作用的抑制.植物生理学报，1997，23（1）：77——82 [5]李元，王焕校，吴云树等.Cd、Fe及其复合污染对烟草叶片几项生理指标的影响[J].生态学报，1992，12（2）：147——153 [6]杨居荣，贺建群等.Cd污染对植物生理化的影响[J].农业环境保护，1995,14（15）：193——197 [7]张义贤.重金属对大麦（Hordeum vulgavte）毒性的研究[J].环境科学学报，1997,17（2）：199——204 [8]况琪军，夏宜诤，惠阳.重金属对藻类的致毒效应[J].水生生物学报，1996，20（3）：277——283 [9]蒋义智，黎继岚.镉对烟草光合特性的影响[J].植物生理学通讯，1989，6：27——31 [10]秦天才，吴玉树，王焕校等.镉、铅及其相互作用对小白菜根系生理化特征的研究[J].生态学报，1994，14（1）：46——50 [11]周易勇，刘同仇，邓波儿.铬污染对辣椒叶绿素和铁含量及几种酶活性的影响[J].环境科学，1991，11（3）：28——29 [12]Stobark Ak, GrifithsWT. The effect of Cd2+ on the biosynthesis of chlorophyll in pleases of bar ley. Plant physiol,1985,63:293——298 [13]Bazzaz FA,Rohlfe Gl,Carlson RW. Effect of Cd2+ on photosynthesis and transpiration of excised leaves of corn and sunflower. Physiol Plant,1974,32:373——377 [14]周青，黄晓化，黄纲业等.La对Pb伤害大豆幼苗的影响[J].应用与环境生物学报，1999，5（1）：22——25 [15]孙赛初，王焕校.水生维管束植物受镉污染后的生理变化信受害机制初探[J].植物生理学报，1995，11（2）：113——121 [16]陈国祥，施国新，何兵.Hg、Cd对莼菜越冬芽光合膜光化学活性及多肽组分的影响[J].环境科学科学学报，1999，19（5）：521——525 [17]任安芝，高玉葆，刘爽.铬、镉、铅胁迫对青菜叶片几种生理生化指标的影响[J].应作与环境生物学报，2000，6（2）：112——116 [18]GilJ, MoralR. Effect of Cadmium on physiological and nutritional aspects of tomato plants,I.Chlorophyll(a and b )and cartenoids. Fresenius Environ Bull,1995,4：430——435 [19]杨丹慧.重金属离子对高等植物光合膜结构与功能的影响[J].植物学通报，1991，8（3）：26——29 [20]Hendrik K.In situ detection of heavy metal substituted chlorophylls in water plants. Photosynthesis Research,1998，58（2）：123——133 [21]潘瑞炽，董愚得.植物生理学（第三版）[M].北京：高等教育出版社，1995。 [22]李大辉，施国新等.Cd2+或Hg2+水污染对菱体细胞的细胞核及叶片超微结构的影响[J].植物资源与环境，1999，8（2）：43——48 [23]李荣春.Cd、Pb及其复合污染对烤烟叶片生理化信细胞亚显微结构的影响[J].植物生态学报，2000，24（2）238——242 [24]Fernandos JC,Henriques Fs. Biochemical, physiological and structural effcts of excess copper in plants.Bot Rev,1991，57（3）：246——273 [25]彭鸣，王焕校.镉、铅诱导的玉米（Zea mays L.）幼苗细胞超微结构的变化[J].中国环境科学，1991，11（6）：426——431 [26]Gabor H, Ralazs S.Molecular rearrangements of thylakoids after heavy metal poisoning ,as seen by Fourier transform infrated(FTIR)and electron spin resonance(ESR)spectroscopy.Photosynthesis Research,1999，61（3）：241——252 [27]Xylaender M.Influence of mercury on the green alga Haematococcus lacustris.Inhibition effects and recovery of inpact.Botanica Acta,1998，111（6）：467——473 [28]Emanuel F,Sabrina A. Modulation of DI protein turnover under cadmium and heat stresses monitored by methionine incorporation. Plant Science,1999，144（2）：53——61 [29]杨丹慧，许春辉，王可玢等.镉离子对菠菜叶绿体色素蛋白质复合物及激发能分配的影响[J].植物学报，1990，32（3）：198——204 [30]李功藩，蔡琬平.铜离子在光系统II电子传递中的作用部位和方式[J].植物学报，1995，11（3）：303——309 [31]Miles CD,Brandle JR,Daniel Dj et al.Hg2+-ADCMU independent electron acceptor of PSII.Biochem Biophys Res Commun,1973，50：1113——1119 [32]Bazzaz MB and Govindjee.Effect of cadmium nitrate on the spectral characterristic and light reactions of chloroplasts.Environ letr,1974，6：1——12 [33]Sheoran IS Singal HR,Singh R.Effect of cadmium and nickel on photosynthesis and the enzymes of the photosynthetic carbon reduction cycle in pigeon pea(Cajanus Cajan L)Photosynthesis Reseach,1990，23：345——351 [34]Weigel HJ.The effect of Cd2+on Photosynthetic reactions of mesophyll protoplasts. Physiol plant,1985,63：192——200 [35]Eicchan GL,Clark p,Tarien E. The interaction of metal ions with polynucleotides and related compounds.J Biol Chem,1969，244：937——942 [36]Page AL,Binghan FT,Nelson C.Cadium absorption and gowth of various plant species as influenced by solution cadmium concentration.J Environ Qual 1:288——291 本文来源：https://www.wddqw.com/doc/83a75409a9ea998fcc22bcd126fff705cc175cf7.html